类器官培养之基质胶去除攻略
骑着电摩转呀转
2025-02-17 19:36:36
很多老师后台私信咨询类器官培养时基质胶如何去除,避免基质胶干扰后续的wb、流式以及病理实验,那我也是查看了一些文献推出了自己的攻略,方便各位老师借鉴。
一、EDTA-PBS(温和去胶溶液)(浓度为1-5mM,具体浓度参照胶的浓度调整)
使用方法:
- 预冷溶液:使用前将EDTA-PBS置于4℃预冷。
- 解离步骤:
1. 吸除培养基,加入预冷EDTA-PBS(体积覆盖类器官培养物)。
2. 冰上孵育30分钟(或4℃静置),期间轻摇培养皿辅助基质胶溶解。
3. 离心(300 ×g,5分钟)收集类器官,PBS洗涤2-3次。
二、Dispase酶溶液(酶解法解离基质胶)(1-2 U/mL(常用1 U/mL,根据类器官耐受性调整)。)
使用方法:
- 解离步骤:
1. 吸除培养基,加入预热的Dispase溶液(37℃)。
2. 37℃孵育10-20分钟(观察基质胶溶解情况,避免过度消化损伤类器官)。
3. 加入等体积含血清的培养基终止反应(血清抑制酶活性)。
4. 离心(200 ×g,5分钟),PBS洗涤2-3次。
三、其他替代试剂
1. Collagenase IV(胶原酶):
- 终浓度1-2 mg/mL,溶解于PBS,37℃消化30-60分钟(适合含胶原的基质胶)。
2. Accutase:
- 直接使用商品化Accutase溶液,37℃孵育10-15分钟(温和解离,适合脆弱类器官)。
关键注意事项
1. 无菌操作:
- 所有试剂需过滤除菌(EDTA-PBS/Dispase),避免污染。
2. 类器官活性保护:
- 控制酶解时间,避免过度消化导致细胞死亡(可通过台盼蓝染色检测活性)。
3. 残留基质胶检测:
- 若洗涤后仍有胶状残留,可增加离心速度(500 ×g)或延长洗涤次数。
4. 温度敏感性:
- EDTA-PBS需预冷,Dispase需预热至37℃以提高效率。
5. 试剂保存:
- Dispase母液分装后-20℃保存,避免反复冻融(活性损失
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吱吱咋咋
EDTA浓度多少呀
一条大何
用我们通用型回收液,回收效率90%以上
tnfqr732
你好,请问使用上面的方法去除基质胶之后,类器官的形态会受到影响吗